毕氏酵母(Pichia pastoris)感受态细胞制备及转化1、毕氏酵母氯化锂转化法(1)试剂1M LiCl(用去离子 \t _blank 蒸馏水配制,滤膜过滤除菌;必要时用消毒去离子水稀释)50% PEG3350(Sigma P3640? 用去离子 \t _blank 蒸馏水配制,滤膜过滤除菌,用较紧的盖子的瓶子分装)2mg/ml salmon sperm DNA / TE(10m
1)准备感受态细胞(1)25ml YPD 接种GS115单菌落,250rpm,300C,摇菌16-18 hours;(2)25ml YPD,接种百分之五,同时留1ml空白YPD(真馏水也行),30度 ,250rpm振荡培养~5hours至 A 600为 0 8~1 0(大约108细胞/ml);(3)1500rpm室温离心5min收获细胞,每份感受态需要(15ml酵母/15mlEP管)×4
一、酵母感受态细胞的制备1 在YPDA培养基上接种酵母AH109菌株,培养时间≤4周,菌落直径为2-3 mm,在15 mL离心管中加入3 mL新鲜的YPDA液体培养基,每个离心管中一个菌落,30 ℃,250 rpm,8 h。2 吸取10 μL 种子菌加入到含有50 mL YPDA的250 mL 三角瓶中,30 ℃,250 rpm,16-20 h。测OD600=015-03,将培养液移至50 m
目录来源螺旋网大肠杆菌感受态细胞的制备 2一、CaCl 感受态细胞的制备 32二、电转感受态细胞的制备 4枯草芽孢杆菌感受态细胞的制备及转化14农杆菌感受态细胞的制备及转化17酵母感受态细胞的制备及转化 18关于载体连接的讨论 23 -1- 大肠杆菌感受态细胞的制备体外连接的 DNA 重组分子导入合适的受体细胞才能大量增殖。野生型 并不容易转化,这是由于细菌产生一种酶能迅速降解进入的外源DNA
大肠杆菌感受态细胞的制备和转化第一节 概 述在自然条件下,很多质粒都可通过细菌接合作用转移到新的宿主内,但在人工构建的质粒载体中,一般缺乏此种转移所必需的 mob 基因,因此不能自行完成从一个细胞到另一个细胞的接合转移。如需将质粒载体转移进受体细菌,需诱导受体细菌产生一种短暂的感受态以摄取外源 DNA。转化(Transformation)是将外源 DNA 分子引入受体细胞,使之获得新的遗传性状的
农杆菌感受态细胞的制备[实验原理]在利用根癌农杆菌介导的基因转化中,首先要获得含有目的基因的农杆菌工程菌株。在基因工程操作中,感受态细胞的制备和质粒的转化是一项基本技术。感受态是细菌细胞具有的能够接受外源DNA的一种特殊生理状态。农杆菌的感受态可用CaCl2处理而诱导产生。将正在生长的农杆菌细胞加入到低渗的CaCl2溶液中,0℃下处理便会使细菌细胞膜的透性发生改变,此时的细胞呈现出感受态。制备
感受态细胞制备和细菌的转化大肠杆菌DH5α感受态细胞的制备从冻存管中挑取细胞在LB培养基平皿上划线接种后过夜培养挑取单克隆菌落至5 ml LB培养基中37℃220 rmin振荡培养过夜把菌液按1:100(视浓度而定)转接入50 ml LB液体培养基内37℃ 200 rmin培养至OD600≈ (大约3小时)此时菌液呈现半透明云雾状把菌液冰浴冷却10-15 min于4 ℃4000 rmin离心10
感受态细胞制备1 挑取一单克隆与5 ml LB培养基中,37℃,200rpm 过夜。2 取 2 ml 菌液于新鲜的200 ml LB中,置于37℃摇床至OD约为053 收集菌于4个50 ml离心管中,冰浴1h4 4℃离心515min,3500 rpm,去上清。(以后所有枪头、离心管都要冷浴)5 加20 ml 冷的Buffer 1 于每个50 ml离心管中,轻轻摇匀。6 冰浴15 min。7 轻
Ca
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