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    相关仪器的信息:?透射电镜:JEOL() JEM-1230(型号) TEM产地:日本?超薄切片机:Reichert-Jung Ultracut E ultramicrotome产地:奥地利扫描电镜:Philips XL30 ESEM产地:捷克?临界点干燥仪:Hitachi HCP-2 Critical point dryer产地:日本?真空喷镀仪:Eiko?IB5?ion coate

  • 流程.doc

    电镜样品操作流程1、要求细胞数在106以上;2、细胞由6孔板转移到EP管,1000转/5分钟,去上清;3、加入固定液(不用重悬,固定液由电镜室提供,已拿到),固定20分钟; 4、以2000转/20分钟离心,直接送检。PS:1电镜室在新科技室一楼左手边,到时我一起跟着过去了,因为后续还要约时间观察细胞;2周四(有时周三集中处理标本),所以固定完标本可以先放4°C保存或先送到电镜室保存; 3如果是中山大学基础学院220元一个标本;本校280元;外单位345元。

  • .ppt

    电子显微镜制样技术按样品类别: 超薄切片 冷冻蚀刻的复形膜 悬浮样品的滴片 培养细胞等按研究内容: 对细胞膜上的抗原或抗体进行免疫标记 追踪细胞中某些大分子的放射自显影标记 对细胞中的某些生化成分作定位、定性、定量研究 细胞膜、细胞器的超微结构进行观察 样品要很薄(纳米);良好保存精细结构;样品具一定反差。对于TEM观察的生物样品的特殊要求:生物常规样品透射电镜制备技术 超薄切片技术超薄切片技术

  • 关于透射和扫描等的备.ppt

    单击此处编辑母版标题样式单击此处编辑母版文本样式第二级第三级第四级第五级第五章 透射电子显微镜的 样品制备技术5.1 TEM对样品的基本要求制备原因要求措施放大倍数100万倍铜网直径3mm脱水固定时易浸透 取材小样品电子束打击样品易变形样品结实固定包埋高真空(电子束穿透能力) 样品在真空状态下无挥发物脱水电子束穿透能力弱样品切片厚度﹤100nm超薄切片样品组成元素原子序数小图像反差小 增加反差重

  • 扫描生物备技术.ppt

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  • 透射子显微备技术.doc

    透射电子显微镜样品制备技术样品制备的方法随生物材料的类型以及研究目的而各有不同。对生物组织和细胞等,一般多用超薄切片技术,将大尺寸材料制成适当大小的超薄切片,并且利用电子染色、细胞化学、免疫标记及放射自显影等方法显示各种超微结构、各种化学物质的部位及其变化。对生物大分子(蛋白质、核酸)、细菌、病毒和分离的细胞器等颗粒材料,常用投影、负染色等技术以提高反差,显示颗粒的形态和微细结构。此外还有以冷冻

  • 子显微设备使用安规程.doc

    电子显微镜制样及制样设备使用安全规程一通则1.操作前应经过相关培训或学习过操作规程和安全规程如果长期未操作应重新学习操作规程和安全规程2.认真检查劳动保护用品是否适用穿戴好劳动保护用品后方可上岗3.注意安全用电不要用湿手触摸开关插座等设备电源应有可靠的接地装置4.设备使用完毕及时关闭电源水龙头气阀用抹布将设备擦拭干净5.盛有溶液的容器必须贴上标签标明成分配制人保存起止日期6.配置电解液萃取液等

  • 切片流程.doc

    电镜切片制样流程 电镜切片制样流程(植物)1 前固定3h;2 洗涤液洗涤三次,每次30分钟;3 后固定,4℃过夜;4 洗涤液洗涤三次,每次30分钟;5 丙酮脱水:10-90%丙酮逐级脱水,一共9级,每级20分钟,100%丙酮脱三次,每次30分钟(整个过程在摇床上进行);6 环氧丙烷:丙酮=1:1一次30分钟;7 环氧丙烷三次,每次30分钟;8 环氧丙烷:树脂=3:1,2小时(不加加速剂的树脂);

  • (自己整理).docx

    SPI-PON 812常规电镜制样流程实验前准备:青霉素瓶、枪头、移液枪、量筒、注射器、吸管、滤纸、牙签、包埋模具、烧杯、废液缸、玻璃棒(除一次性耗材外,均需严格洗涤干净,烘干后备用)。实验步骤(包埋前步骤均在4°C冰箱中进行):A.取材及固定:用锋利刀片将样品切成1 mm3的小块,取材后尽快放入预冷的戊二醛固定液中,抽真空后,换新鲜的固定液于4°C冰箱中固定24 h(根据材料不同,固定时间不

  • 实验一--透射子显微备.doc

    第二篇? 材料电子显微分析?实验一? 透射电子显微镜样品制备一实验目的1.掌握塑料—碳二级复型样品的制备方法2.掌握材料薄膜样品的制备方法—双喷电解减薄法和离子薄化法二塑料—碳二级复型的制备原理与方法(一) AC纸的制作所谓AC纸就是醋酸纤维素薄膜它的制作方法是:首先按重量比配制6醋酸纤维素丙酮溶液为了使AC纸质地柔软渗透性强并具有蓝色在配制溶液中再加入2磷酸三苯脂和几粒甲基紫??? 待上述物质全

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